内脏组织范文（精选7篇）

内脏组织 第1篇

1 材料与方法

1.1 材料

试验羊来自四川省凉山半细毛羊原种场。分别选取健康的10月龄公母羔羊各3只，屠宰后取1 cm3左右的心脏、肝脏及肾脏样品放入液氮中保存，运回实验室置-70℃冰箱中冷冻保存。RNA提取试剂为TaKaRa NAiso Reagent、DEPC，大连宝生物公司生产。

1.2 方法

1.2.1 绵羊内脏总RNA的提取及方法

按照TaKaRa说明书进行提取，经多次试验，发现提取的结果并不理想。于是参考Trizol一步提取法，并对其进行相应的改进，取样设计为25、50、75、100 mg的质量梯度。

1.2.1. 1 TaKaRa推荐方法的实验步骤

(1)取-70℃保存的绵羊组织样品约100 mg迅速转移至用液氮预冷的研钵中，用研杵研磨组织，其间不断加入液氮，直至研磨成粉末状。(2)向研钵中加入适量的RNAiso Reagent，将研磨成粉末状的样品完全覆盖，然后室温静置，直至样品完全溶化，再用研杵继续研磨至裂解液呈透明状。(3)将匀浆液转移至离心管中，室温静置5 min。12 000 g 4℃离心5 min，小心吸取上清液，移入新的离心管中。(4)向匀浆裂解液中加入适量氯仿(RNAiso Reagent的1/5体积量)，盖紧离心管盖，用力振荡。待充分乳化且溶液呈乳白状后(无分相现象)，室温静置5 min。12 000 g 4℃离心15 min。(5)从离心机中小心取出离心管，吸取上清液转移至另一新的离心管中，再向其中加入等体积的异丙醇，上下颠倒离心管充分混匀，在15～30℃下静置10 min。12 000 g 4℃离心10 min。小心弃去上清，缓慢地沿离心管壁加入75%乙醇1 mL，轻轻上下颠倒洗涤离心管管壁，再12000g 4℃离心5 min后，小心弃去乙醇。(7) RNA的溶解：室温干燥沉淀2～5 min，加入适量的RNase-free水溶解沉淀，待RNA沉淀完全溶解后于-80℃保存。

1.2.1. 2 改进后的方法

(1)将-70℃保存的组织样品加液氮研磨成粉末，方法同上。将研磨的粉末装入1.5 mL离心管中-70℃保存。(2)进行RNA抽提时，称取约25 mg的粉末，加入到预先加好1 mL RNAiso Reagent的1.5 mL离心管中，振荡，使粉末充分散开后室温下静置10 min, 12 000 g 4℃离心5 min。小心吸取上清液，移入新的离心管中。(3)同上步骤(4)，但室温静置时间改为3min。(4)同上步骤(5)。(5)弃上清液后，缓慢加75%的乙醇1mL，轻轻上下颠倒洗涤离心管管壁，室温静置10 min, 7 500 g 4℃离心5 min，弃去乙醇。(6)同上步骤(7)。

用同样程序处理25、50、75、100 mg质量梯度的样品。

1.2.2 RNA提取质量检测

电泳检测RNA提取质量：电泳方法和步骤按照参考文献进行，取3μL提取的总RNA溶液加1μL载样缓冲液，1%琼脂糖凝胶，200V电压下电泳5min，凝胶成像系统下照相观察结果。

核酸蛋白仪检测RNA提取的纯度及浓度：取电泳检测效果较好的RNA溶液10μL，稀释成1 m L后，于核酸蛋白仪上测定A260、A280、A260/A280及核酸浓度。

2 结果

2.1 电泳检测RNA提取质量

运用改进前后的方法提取RNA，经琼脂糖凝胶电泳检测，在紫外凝胶成像系统下照相，其结果见图1。

图1显示，按照说明书提取(即T1～T4)所得到的RNA产物28 s和18 s较淡，5 s非常亮，说明总RNA存在较明显的降解。原核生物的rRNA分三类：5SrRNA、16SrRNA和23SrRNA;真核生物的rRNA分四类：5SrRNA、5.8SrRNA、18SrRNA和28SrRNA。S为大分子物质在超速离心沉降中的一个物理学单位，可间接反应分子量的大小。原核生物和真核生物的核糖体均由大、小两种亚基组成。

从图1 (A1、B1、C1)中可以看出，按改进后的方法提取RNA，三种样品(心脏、肝脏及肾脏)取质量为25 mg时，提取出的总RNA电泳条带都非常清晰，且28 s亮度是18 s亮度的2倍，5 s较淡，没有拖尾现象出现，说明总RNA完整性较好，提取质量较高。而当取样质量为50 mg时(A2、B2、C2)，各组织总RNA电泳条带都要比取样25 mg时亮，其中心脏(A2)的总RNA电泳条带最清晰，可清晰地看到28 s和18 s两条带，5 s非常淡，说明取样50 mg时可从心脏中提取出质量非常高的总RNA。肝脏和肾脏(B2和C2)取样50 mg时，提取的总RNA浓度稍高，完整性有所下降，存在一定程度的降解，对于这种提取质量的总RNA，则要根据后续研究的目的来决定所提取的总RNA是否适合进行后续试验。

图1中，当取样质量为75mg (A3、B3、C3)和100 mg (A4、B4、C4)时，均可看到28 s、18 s、5 s三条带，且5 s带非常亮，亮度超过了28 s和18 s;取样质量为100 mg时，5 s带最亮，而18 s和28 s带最淡。此结果显示的总RNA电泳条带与按照说明书提取的RNA产物一样，存在严重的降解。

注：A心脏，B肝脏，C肾脏，T心脏;A1～C4为改进方法后提取的结果，T1～T4为按说明书提取RNA的结果;改进方法组取样质量A1、B1、C1为25 mg, A2、B2、C2为50 mg, A3、B3、C3为75 mg, A4、B4、C4为100 mg。

2.2 核酸蛋白仪测定RNA提取效率

取电泳结果检测总RNA，对提取质量完整性较好的总RNA溶液进行紫外吸收值及回收率测定，结果见表1。

表1结果显示，提取的总RNA A260/A280的值大部分处在1.7～2.0之间。一般来说A260/A280应在1.7～2.0之间，若低于1.7，则说明RNA溶液中存在一定的蛋白质污染。

从表1可以看出，试验所获得的总RNA中，蛋白质污染少，纯度较高，而肝脏(B1、B2)所提总RNA的A260/A280值要比其它两个值小，可能是因为其中的蛋白质污染要比其它两种组织多所造成的。肾脏C2的A260/A280值大于2.0，说明它们可能还存在一定程度的降解，这一点可以在图1中看到C2存在模糊的5 s带。

3 讨论

3.1 在采样及提取过程中尽量消除外源性RNA酶的影响及降低内源性RNA酶的活性是防止RNA降解的关键，具体有以下几方面措施：

(1)采样时，动物死亡5 min内将样品采集，装入样品袋并迅速放入液氮保存，运回实验室后，样品保存于-70℃。

(2)在样本匀浆过程中不断加入液氮，且磨成的粉末要快速转移至事先预冷到-70℃的离心管内，方可避免磨样过程中样品温度升高致使RNA酶恢复活性造成RNA降解。

(3)提取时所需试剂应全部用DEPC处理过的水配制，溶解RNA用的水为DEPC处理水;各种枪头、离心管则需用0.1%DEPC水浸泡过夜，然后高温高压灭菌处理;玻璃及金属器皿应于180℃高温下烘烤8 h以上。实验过程中，人为带入的RNA酶污染尤其严重，所以实验时，实验人员都必须戴手套、口罩及一次性帽子，勤换手套;操作中禁止说话，尽可能地避免操作过程中外源性RNA酶的污染。3.2样品取量的多少可以间接影响实验结果的好坏。RNA在各个部位的分布情况也是决定取样量的关键。本试验在样本质量为25 mg和50 mg时获得了较好的提取质量。本研究将按这两种质量提取的总RNA于核酸蛋白仪上进行纯度和核酸浓度的检测，结果显示A260/A280的值基本上都在1.7～2.0之间，这说明总RNA溶液中蛋白质污染较小，RNA纯度较高。

内脏组织 第2篇

低温胁迫在植物中的研究较为深入, 以鱼类为研究对象的较少, 梁友光等[1]对长吻鮠越冬的生理生化适应进行了比较的深入研究, 王晓杰等低温胁迫下许氏平鲉补偿生长[2,3,4,5]也进行了相关的研究, 进一步解释了补偿生长的可能机制[6]。常玉梅等[7,8]和丁雷[9]对鲤鱼的低温胁迫进行了研究, 反映出低温胁迫下鲤鱼血液生理生化指标等所受到的影响。

在罗非鱼中的低迫胁迫研究较少, 本实验以荷那龙罗非鱼为研究对象, 分别取背侧肌、肝胰脏、肠和内脏脂肪组织作为样品来分析低温胁迫对实验对象所造成的影响, 实验中没有涉及补偿生长, 在几种实验温度组内, 持续长时间的取样, 对比分析, 体内营养物质的利用顺序和优先利用的组织, 以期为相关的研究提供相应的理论数据参考和技术支持。

1 材料与方法

1.1 实验材料

荷那龙罗非鱼 (Oreochromis hornorum) , 属于鲈形目 (Perciformes) , 鲈形亚目 (Percoidef) , 丽鱼科 (Cichlidae) , 罗非鱼属 (Oreochromis) 。实验中所用到的所有实验对象均由实验室条件养殖, 体重为100±10g。

1.2 实验试剂

已醚、浓盐酸、浓硫酸、氢氧化钠、硼酸、甲醇、氯仿、氯化钠、正已烷、氢氧化钾、异辛烷、无水硫酸钠等以上所用的药品均为分析纯。

1.3 实验器材

凯氏定氮仪、水浴锅、离心机、索氏抽提仪、气相色谱仪、氮气吹干仪、粉碎机、涡旋振荡器、旋转蒸发仪、微量移液器等指标测量用具及实验中常用的解剖用具。

1.4 实验方法

1.4.1 实验取样方法

实验将在25℃下暂养2周的荷那龙罗非鱼, 在室内循环水族箱内进行分组实验, 实验共设有7个温度组, 分别为25℃、20℃、18℃、16℃、14℃、13℃、12℃, 其中以25℃组为对照。将暂养结束的鱼, 每个温度组分90尾, 设3个平行, 每个平行组放养30尾, 以1℃/d的速率开始从25℃降温, 降到所需的温度组后, 开始计时, 取样时间为0 d、10 d、20 d、30 d、40 d和50 d, 共取样6次, 每个平行组取3尾鱼。

取样时取出的实验对象用纱布擦干表面的水分, 现场测量样品实验对象的全长, 体长, 然后称取鱼体体重。在冰盘中解剖, 取出内脏团, 用生理盐水洗去附着血液, 滤纸吸干后对其进行称重, 之后再分离出肝胰脏、去除内溶物的肠组织、内脏中脂肪组织, 同样用滤纸吸干后对其称重。最后, 取鱼的背侧肌肉, 用手术剪后, 取下, 称重。所有的样品取完后均采用-20℃冰箱保存。长度精确到0.1 cm, 重量精确到0.01 g。

1.4.2 样品处理方法

在105℃下, 烘干, 测定水分含量后, 将肌肉样粉碎。取0.3 g烘干之后的样品, 采用氯仿-甲醇法, 于15 ml的离心管中, 加CHCL3/CH3OH/H2O=1∶2∶0.8的混合液7.6 ml, 超声波提取2 min, 剧烈震摇5 min, 3 000 r/m离心10 min, 取上清液于分液漏斗中。重复2~3次, 合并液体, 向分液漏斗中加入6 ml CHCL3, 使CHCL3/CH3OH/H2O=2∶2∶0.8, 震摇30 s, 再向分液漏斗中加饱和氯化钠水溶液6 ml, 使CHCL3/CH3OH/H2O=2∶2∶1.6, 震摇30 s, 分层后, 下层旋转蒸发至恒重, 得粗脂肪, 冷冻保存[10]。其他组织采用索氏抽提法提取所含有的脂类物质。

皂化方法:向冷冻保存的总脂中加2 ml氢氧化钾-甲醇 (4:1) , 充N2后, 于60℃水浴皂化2 h, 皂化液转移至15 ml的离心管中, 用HCL调p H<1, 加饱和氯化钠水溶液1 ml, 用氯仿2 ml∶正己烷 (1∶4) 洗样品瓶合并到离心管中, 涡流振荡, 离心4 000 r/m 10 min, 取上层分析[10,11,12,13,14,15,16,17,18,19,20,21,22,23,24,25,26,27,28,29,30]。

皂化之后的样品采用, GB-T 17376-2008的方法采取酯交换法处理, 得到甲酯化之后的样品, 用Aligent 7890GC气相色谱仪测定脂肪酸的组成。

处理条件如下:HP-FFAP的色谱柱, 进样口温度250℃, 分流比50∶1, 流速1.8 ml/min, 检测器温度270, FID检测器, 氢气流速35ml/min, 氮气流速35 ml/min, 空气流速350 ml/min。升温程序:起始温度110℃, 以8℃/min的速度升至220℃, 保持16 min。

气相色谱的测定结果, 采用面积归一化法, 测定各种脂肪酸的百分含量[11]。

具体的方法如下:

校正因子的计算:第i组分的校正因子按下式计算:

fi—第i组分脂肪酸甲酯的校正因子;

Ci—标准样中组分i的浓度;

Ai—标准样的组分i的色谱峰面积。

样品中各脂肪酸的质量分数按下式计算:

wi—某脂肪酸的质量分数%;

∑ (fi·Ai) —所有组分的校正因子与色谱峰面积之和。

1.4.3 数据处理方法

实验所得到的所有的实验数据均采用SPSS17.0软件进行方差分析、Turkey法进行多重比较。

2 结果与讨论

2.1 低温胁迫对形态学指标的影响

实验期间, 除对照组没有明显的变化规律外, 其他各实验组的实验对象肝体指数、脏体指数和肥满度都随着取样时间的延长而下降, 起始值相比差异显著 (P<0.05) 。

2.2 低温胁迫对肌肉成分的影响

肌肉成分为的水分含量随取样时间的延长, 水分所占百分含量上升, 温度越低, 上升幅度越大, 25℃没有变化, 水分含量差异不显著, 其他的各个温度组, 起始值相比差异显著 (P<0.05) 。粗脂肪含量表现出和水分含量不同的变化趋势, 随着取样时间的延长, 含量下降, 温度越低下降越快, 和起始时的含量相比差异显著 (P<0.05) 。

2.3 低温胁迫对体内组织脂肪酸成分的影响

2.3.1 低温胁迫对肝胰脏脂肪酸成分的影响

肝胰脏中脂肪酸的共测得25种, 其中命名的有22种, 所有碳原子的分布为12~24个碳原子之间, 含量最多的是16和18个碳原子的脂肪酸, 其中SFA的含量变化范围为20.99%~48.49%, UFA的变化为33.08%~60.57%, MUFA从12.92%~36.98%, PUFA从18.46%~28.21%。SFA的均值为37.18%, UFA的均值为52.18%。

双因素的方差分析的结果得知, 温度和取样天数均对结果产生了极显著的影响 (P<0.01) 。SFA的变化在10 d取样时, 含量最高, 在六次取样过程中, 有两个高峰出现, 分别是10 d和40 d, 数据差异极显著。所有的温度组有先上升, 后下降, 再上升, 后下降的趋势。在相同的取样次数下, 20℃数值差异最大。25℃没有明显变规律。

单不饱和脂肪酸也有两个峰值出现, 分别在0 d、30 d的两次样时, 整体趋势是先下降后上升, 最后下降, 各组值的结果差异极显著。但是在相同的取样时间时, 各温度组的规律却是先上升, 后下降, 再上升的趋势, 变化规律不明显。

PUFA除了对照组25℃之外, 其余几个组均有明显的规律呈现出来, 在10 d、40 d取样时, 出现数值高峰, 整体的趋势是先上升, 后下降, 再上升, 最后回落。各取样结果间的差异极显著。在不同的取样温度下, 各组没有明显的规律出现。n-3 PUFA、n-6PUFA没有体现出明显的规律。

2.3.2 低温胁迫对肠脂肪酸成分的影响对鱼肠组织的脂肪酸进行分析时, 总共发现25种脂肪酸, 其中命名的有22个, 碳原子数分布范围12~24之间, 丰度最高的是16和18碳的脂肪酸, 实验期间, 饱和脂肪酸 (SFA) 的变化范围27.25%~51.08%, 不饱和脂肪酸 (UFA) 的变化范围为40.21%~55.18%, 其中单不饱和脂肪酸 (MUFA) 为含量变化范围为20.42%~30.07%, 多不饱和脂肪酸 (PUFA) 的变化范围为16.09%~30.87%见图1、2。

由双因素的方差分析结果得知, SFA的变化受温度的和天数的影响, 各组值之间差异极显著。在相同的温度, 不同的取样时间下, 饱和脂肪酸先上升后下降, 和对照组相比, 在较低的温度组, 上升的趋势不明显。对应相同的取样时间时, 组间的差异不明显。

由双因素的方差分析结果得知, MUFA的变化受温度的和天数的影响, 各组值之间差异极显著。MUFA在相同的取样温度下, 25、20℃有先下降, 后上升再下降的趋势, 从18℃开始, 后面的几个温度组, 随着取样时间的延长, 含量极显著下降, 没有上升的趋势。而在相同的天数, 不同的温度下取样时, 随着温度的下降, MUFA的含量呈现出了明显的下降趋势, 而且温度越低, 含量越低。

由上图可以可出, 鱼肠中的PUFA的变化规律是随着取样时间的延长, 含量显著上升, 不同的温度组间, 温度越低, 含量越高。

2.3.3 低温胁迫对内脏脂肪组织脂肪酸成分的影响

A组鱼的内脏组织中含有21种脂肪酸, 不含有C24∶0, 碳原子分布范围与上述结果相同, 为12~24个碳原子之间, 含有丰富的16和18个碳原子的脂肪酸, C16∶0 (棕榈酸) 20.06%~23.79%、C16∶1 (棕榈烯酸) 3.91%~5.89%、C18:0 (硬脂酸) 0.11%~6.08%、C18:1 (油酸) 25.54%~29.93%、C18∶2 (亚油酸) 0.22%~17.38%、C18∶3 (亚麻酸) 0.10%~1.25%、EPA (二十碳五烯酸) 0.24%~0.89%、DHA (二十二碳六烯酸) 0.91%~3.69%。SFA、UFA、MUFA、PUFA的变化范围分别为27.42%~34.92%、43.69%~61.82%、35.49%~40.53%、5.30%~23.31%。

由图4可以看出, 对照组在整个实验过程中, SFA没有明显的变化规律, 其他各实验组的SFA含量都有下降的趋势, 而且14℃以下的实验组下降的更加明显, 特别到第4次实验取样时, 内脏内很少有脂肪组织, 所以相比其他组织的样, 只有3次样, 可能为低温过程中身体的各种代谢提供能量, 消耗较大。

由图5可以看出, 对照组的MUFA含量变化较大, 没有明显的变化规律, 其他的实验组的规律和SFA相似, 有明显的下降趋势, 温度越低下降越明显。MU-FA和SFA的结果来看, 各组之间的差异更大, 除对照组外, 各组虽然有相同的变化趋势, 但组间表现出来的数值差异也很大, 可能的原因是饱和脂肪酸代谢的中间产物为单烯酸。

由图6可以看出, PUFA表现和SFA、MUFA完全相反的规律, 这和肌肉中PUFA表现的规律相同, 都随取样时间的延长, 所占的百分数上升, 可能是因为SFA和MUFA被利用, 导致含量上升, 或者其他更深层次的原因存在, 实验中未能发现。

3 结论

实验结果发现, 在不同的强度的低温胁迫下, 各取样时间点间差异明显, 肝体指数、脏体指数和肥满度几个形态学指标都随着取样时间的延长而下降;肌肉粗水分上升, 粗脂肪含量下降, 粗蛋白在实验条件下, 没有发生明显的变化。

荷那龙罗非鱼的四种组织中脂肪酸的变化也表现明显的规律, 肌肉和内脏脂肪组织中SFA和MUFA下降, PUFA上升;肠和肝胰脏中脂肪酸变化没有规律。在低温胁迫下, 荷那龙罗非鱼可能优先利用内脏脂肪组织和肌肉中的能量, 出于对脏器的保护作用最后利用肝胰脏和肠中存在可利用能量。

摘要：实验以荷那龙罗非鱼 (Oreochromis hornorum) 为研究对象, 在室内控温循环水族箱内, 按照1℃/d的速度, 将温度分别从暂养的25℃, 降到25℃、20℃、18℃、16℃、14℃、13℃、12℃几个实验温度组进行低温胁迫实验, 每隔10 d定期取样, 取样5次, 取背侧肌、肝胰脏、肠和内脏脂肪组织四个组织的样, 来分析低温胁迫对实验对象所造成的影响。结果发现:在实验过程中, 肠和肝胰脏组织没有明显的变化规律;背侧肌和内脏脂肪组织在实验期间两者SFA和MUFA都随着取样时间的延长, 所占脂质的百分含量下降, 各组间的差异显著 (P<0.05) , PUFA百分含量上升 (P<0.05) , 内脏脂肪组织SFA和MUFA下降, PUFA上升, 差异极显著水平 (P<0.01) 。

内脏异位的内镜检查 第3篇

例2男,46岁,因反复上复疼痛1年,时有反酸行胃镜检查,查前无内脏异位提示。常规左侧卧位插镜,胃镜进入贲门,见胃体腔呈螺旋状向下,经多次进镜失败,逐患者改为右侧卧位,见螺旋状向下的胃体腔不复存在,进镜顺利,检查成功。胃镜诊断:①浅表性胃炎;②十二指肠球部溃疡(A2期)。查毕听诊,胸透为右位心。2讨论

内脏异位非常罕见,在实践工作中可遇到内脏异位的患者因上消化道症状而进行胃镜检查。当发现胃体腔螺旋状向下时,还误认为是“胃扭转”但当反复进镜受阻,后经全面详细查体及X线、B超检查,证实为内脏异位,才认为进镜受阻与内脏异位有关,可将常规内镜检查的左侧卧位改为平卧、右侧或坐位[1]。就能顺利进行内镜检查,明确诊断,故内镜检查前必须详细查体,当发现内脏异位时,可采取正确体位,使检查顺利成功。

关键词：内脏异位,胃镜检查,胃炎

参考文献

鸡内脏卤制工艺及设备 第4篇

一、卤制工艺

卤制鸡内脏的工艺流程如下:

清洗后的鸡内脏送料卤制沥汁真空包装

卤制鸡内脏的工艺流程示意图如下:

各工序分述如下:

1、入料:

将清洗后的鸡心、鸡肝、鸡胗等需要卤制的鸡产品放到入料机上, 由人工把产品均匀铺开, 入料机会匀速将产品送入卤制机中。

2、卤制:

送入卤制机中的产品原料与卤制机里的卤制液充分混合后, 在一定温度和时间的控制下, 会将原料加工成色、香、味俱佳的熟食产品。

3、沥汁:

卤制后的产品上挂有多余的卤制液, 使用沥汁槽可以将其回收, 以便重新使用。

4、过滤:

加工产品后的卤制液里含有许多固体颗粒, 需过滤去除, 过滤后的卤制液可循环使用。

5、制液:

卤制机里的卤制液是由卤制产品所需的固体卤制调料、过滤后的卤制液以及水一起在酱料卤制罐里加热熬制的, 需待调料的味道充分浸入到溶液中, 卤制液浓度较高时方可使用。

二、卤制设备

1、入料机

需卤制的鸡内脏送料采用入料机 (见图1) , 该入料机主要由驱动部分、输送部分和机架三部分组成。工作时, 将原料放到入料机输送带上, 人工将物料均匀铺开后, 输送带在驱动机构的带动下匀速向前运动, 在摩擦力的作用下, 物料随输送带一起向前运动, 从而将物料匀速送入卤制机中。

1.机架2.输送部分3.驱动部分

1、卤制机

卤制机 (见图2) 是本系统的主要核心设备, 物料的卤制过程全部在卤制机中进行。该机采用螺旋推进原理, 将物料由入口端推向出口端。卤制机的驱动机构带动螺旋轴旋转, 螺旋轴上的螺旋叶片推动物料匀速向前运动, 在出口端由翻料板翻出卤制机, 从而完成自动进料、自动出料、连续生产的自动化过程。该机采用蒸汽加热方式, 设有温度时间自动控制系统, 蒸汽压力为0.4MPa, 卤制温度控制在85～90℃, 卤制时间控制在40～50min, 从而有效地保证了产品的卤制质量。

1.驱动机构2.螺旋轴3.壳体4.烟囟5.上盖6.温控系统

2、沥汁槽

从卤制机里出来的产品上挂有卤制液, 需要沥干液体。在沥汁槽的内部设有过滤网板, 产品到达过滤网板上时, 过滤网板可以沥出多余的卤制液, 多余的卤制液经管道流回过滤机, 可以重新使用。过滤网板对过滤后的产品还能起到自然降温的作用, 以便后期包装。

3、过滤机

经卤制加工后的卤制液里, 含有许多原料残渣及其它固体颗粒等杂物, 需经过滤后方可循环使用。过滤机内设有不同过滤网孔的网板, 可以多次过滤卤制液。过滤后的卤制液经管道流回卤制机重新使用。

4、酱料卤制罐

酱料卤制罐是把卤制用的固体调料放入其中进行加热熬制, 使调料的味道充分浸入到卤制液中, 制成饱和溶液, 熬制后的卤制液方可用于卤制产品。该卤制罐主要由罐体、加热螺旋管和放酱料包的网板构成。本罐采用蒸汽加热方式, 设有自动控温系统, 能有效地控制卤制液质量。

结束语

该系统的设计特点在于:⑴机械化连续生产代替了手工劳作, 改善了工作环境, 大大提高了劳动效率;⑵应用了温度时间自动控制系统, 有效地保证了产品的卤制质量。本系统不仅可以用于鸡内脏的卤制加工, 还可以广泛用于鸡、鸭、鹅等家禽脖子、翅膀、腿的卤制加工。

摘要：综述了鸡内脏卤制加工的工艺及其成套加工设备, 并简要叙述了自行研制的鸡内脏卤制设备的原理、性能及生产应用情况。

早餐不规律易患“内脏肥胖” 第5篇

研究显示,与每天吃早餐的人相比,有时吃早餐有时不吃的人更易于积累内脏脂肪,患上所谓的“内脏肥胖”。日本东京慈惠会医科大学综合健康诊疗预防医学中心教授和田高士等人,研究了2004-2009年间入住该中心进行短期全面健康体检的患者资料,研究人员视男性和女性腹围的健康标准值分别为80厘米和85厘米,并调查诊断他们的脂质、血压和血糖值。

在首次检查中,30岁～59岁男女共6 104人未超标,研究人员分析他们每周吃早餐的次数和是否患上内脏肥胖的关系。结果发现,不论男女,每周吃2次早餐的人患上内脏肥胖的风险最高,和每天都吃早餐的人相比,女性患病风险为4.5倍,男性为1.9倍。但是,几乎不吃早餐的人,患内脏肥胖的风险和每天吃早餐的人没什么区别。

内脏脂肪是人体脂肪中的一种,与皮下脂肪不同,它围绕着人的脏器,主要存在于腹腔内,对内脏起支撑和保护的作用。但内脏脂肪过多是身体代谢紊乱的表现,长期内脏脂肪过多会导致高血脂、心脑血管疾病、身体器官机能下降等并发症。现代社会很多内脏脂肪多的人表面看起来可能是体型肥胖,但也很有可能是体型偏瘦,特别是上班族和中老年人,很多人都需要给自己的内脏脂肪“减减肥”!

滇池金线鲃内脏解剖 第6篇

云南土著鱼类有430多种, 占全国鱼类总数的42%以上[4], 近年来对鱼类的系统解剖主要集中在比较解剖学, 然而对云南土著鱼机体结构的研究和报道却很少。该研究以滇池金线鲃为对象, 对其内脏进行初步的解剖学研究, 丰富云南土著鱼类解剖学知识, 同时也为开展滇池金线鲃的进一步研究奠定基础。

1 样本处理

成年滇池金线鲃雌雄各4尾, 体长12～15 cm, 购于嵩明县白邑乡黑龙潭附近。2尾处死后立即进行内脏解剖, 其余标本先经3%～4%甲醛水溶液固定, 再进行内脏解剖。

2 结果与分析

2.1 消化系统

滇池金线鲃消化系统包括口咽、食管、肠、肛门, 以及肝胰和胆囊。

口咽:口次下位, 具有吻须和口角须各1对。上下唇稍肥厚, 上唇后方有吻褶沟, 下唇后方有唇后沟, 但左右沟互不相通, 唇能伸缩。上唇后方口腔面具有口腔瓣。口腔呈前细后粗的圆筒形, 咽腔呈前粗后细的漏斗状, 两者无明显分界, 合称口咽腔。口腔底壁有白色三角形隆起的舌, 无活动性, 侧壁和顶壁黏膜形成纵形腭褶。 咽腔腹侧壁每侧具有5条内鳃裂, 鳃裂由前后鳃耙嵌合形成, 鳃耙呈锥状突起 (见图2) , 鳃耙数5～7。咽腔内下咽齿呈犬齿状, 后部咽齿尖端呈弯钩状, 齿式2.3.4/4.3.2 (见图3) , 与咽齿相对应的基枕骨腹侧黏膜增厚形成齿垫。咽黏膜形成许多圆形突起, 咽齿周围则呈圆锥状突起, 将咽齿藏于其间 (见图2、图4) 。

1.鳃;2.齿垫;3.食管黏膜纵褶;4.咽黏膜突起;5.咽齿;6.食管环;7.肠。

1.食管;2.咽齿;3.鳃耙;4.舌。

食管:呈前粗后细的漏斗状, 较短, 在心脏背侧体中线上, 夹于左右静脉窦及古维尔氏导管之间。食管背侧壁有细小的鳔管开口。食管壁厚, 其黏膜形成10余条纵行皱褶, 借此与咽形成明显分界, 后端与肠相接处具有食管环, 借此与肠分界 (见图2、图4) 。

肠:呈前粗后细的长管状, 末端止于臀鳍前的肛门, 位于体腔下半部。鳔和生殖腺的下方与腹壁之间, 包于肝胰两叶之间, 长度与体长大致相等。肠管盘曲形成数个肠襻, 与肝胰的分叶镶嵌, 肠管之间的空隙处填充有大量脂肪组织。

肠起始部位于体中线上, 起始后增粗形成长囊状膨大部, 在肝胰左右叶之间略下降后行, 与鳔隔有薄层肝胰组织, 越过肝胰接合部后逐渐变细并偏至腹腔右侧, 至腹鳍前缘对应处沿肝胰右后叶的后缘左转前行, 形成1个水平向后突出的后曲, 进而沿腹腔左侧壁水平前行至胸鳍后缘与腹鳍前缘的中点对应处直转下行, 形成近似直角的左中曲, 再绕过腹腔底的中线上行至腹腔右侧肝胰凹陷处的腹面, 在此沿肝胰的凹缘前行并下转形成1个向背侧突出的右背曲, 进而斜向前方绕过腹腔底的中线再次回到腹腔左侧并向前上方行至肝胰前缘处, 沿肝胰左前叶的腹缘向后转并下行形成1个向前背侧突出的左前曲, 当行至腹腔底部时紧贴右背曲腹缘形成1个越过腹底中线的右腹曲, 最后紧贴左中曲的前缘及背缘后行形成左背曲, 然后在鳔和生殖腺的下方沿体中线后行开口于尿生殖窦前方的肛门 (见图5、图6) 。

1.左背曲;2.胃状膨大部;3.左前曲;4.后曲;5.右背曲;6.胆囊;7.食管。

1.后曲;2.右背曲;3.右腹曲;4.胆囊;5.食管;6.左中曲;7.左背曲;8.左前曲。

肠在食管环后方的右侧壁上具有圆形凸起状的胆囊管开口, 开口隐藏于黏膜皱褶中。肠可从后曲和左前曲的中点划分为前、中、后3段, 前段和中段的肠黏膜形成“Z”字形皱褶, 整齐而密集, 肠后段黏膜皱褶逐渐转变为波浪形 (见图7、图8) 。

肝胰:胰组织主要分布于胆囊附近肠的周围, 但不形成独立的器官, 而是散在肝组织内, 两者合称为肝胰, 灰黄色至棕黄色, 位于鳔和生殖腺的下方, 包于肠的外周。肝胰可分为左右两叶, 两叶在鳔缢缩处腹面相连形成接合部 (后缘处是鳔管发出的部位) 。左叶较小, 从接合部发出前、后两叶。左前叶在膘的腹侧向前延伸达横膈膜, 并沿左前曲与左中曲之间的夹角向腹底延伸达右腹曲的凹陷内。左后叶位于后曲背面的凹陷内。右叶较大, 被肠的右背曲分隔为前后两叶。右前叶位于右中曲与食管和左前曲之间, 并向下伸达腹腔底部, 右前叶的前端构成肝胰的前缘。右后叶位于右背曲之后覆盖于后曲腹侧面, 在后曲的凹陷内与背侧的左后叶相接触 (见图9～图12) 。

1.肝右前叶;2.胆囊;3.肝结合部;4.肝右后叶;5.肠后曲;6.脂肪;7.肠左前曲;8.肝左前叶背支;9.肝左前叶腹支;10.脾脏;11.肠左背曲;12.肝左 后叶;13.肛门。

1.肝左前叶腹支;2.肠后曲;3.肝右前叶;4.右腹曲;5.右背曲;6.肝右后叶;7.脂肪;8.肛 门。

1.肠左前曲;2.肠左背曲;3.肠左中曲;4.鳔前室;5.肾脏;6.睾丸;7.鳔后室;8.心脏;9.肝 右前叶;10.肝左前叶腹支;11.肝右后叶;12.肠后曲;13.肛门。

1.肝左前叶腹支;2.肠右腹曲;3.肠右背曲;4.肠后曲;5.脂肪;6.肛门;7.肝右前叶;8.肾脏;9.肝右后叶;10.鳔后室。

胆囊:壁薄, 呈梨形, 深绿色, 埋于肝胰右前叶内, 其前部变细形成胆囊管, 前行开口于肠起始部不远处的右背侧壁, 开口前管径稍微变粗。

2.2 呼吸系统

滇池金线鲃呼吸系统包括鳃和鳔。

鳃:位于口咽后部两侧, 表面有鳃盖, 之下是鳃室, 鳃盖后缘有长半月形鳃膜, 鳃膜向下在喉部左右相连, 鳃膜之下为鳃孔。每侧鳃室内有5条鳃弓, 第1～ 4鳃弓前凹缘各有2片鳃耙, 鳃耙对生, 第5鳃弓前凹缘仅有1片鳃耙 (见图4) 。每个鳃弓上的后突缘各有2片鳃片, 每片鳃片由许多排成一列的鳃丝构成, 鳃耙与鳃丝长度比为1∶ (4～5) 。在鳃盖腹面近第1鳃弓背部有圆环状的伪鳃。

鳔:位于体腔背侧, 肾脏与肝胰之间, 前端与第3椎骨横突相对应, 与头肾背叶后缘相接触, 后端达背鳍基后缘对应处 (见图13、图14) 。鳔前后端均钝圆, 中部缢缩分出前后两室, 两室之间有短的细管相连, 缢缩处填有脂肪, 前室直径稍大, 后室长度约为前室的2.2倍。后室前端腹侧突起并发出细长的鳔管, 鳔管沿肝胰两叶内缘之间前行, 开口于食管背侧, 开口前管径稍增粗。前室壁可分为3层, 外侧2层厚且具有银白色光泽, 纤维走向颇复杂;最内层透明, 无明显的纤维方向, 内层外表面的背腹面各有一前行并发出辐射状分支的动脉, 有静脉与之伴行。后室壁较厚, 外表面的两侧各有一向后并发出辐射状分支的血管, 也有静脉与之伴行。鳔前后室内表面均光滑。

1.膀胱;2.肾;3.头肾;4.肛门;5.输卵管;6.鳔后室;7.卵巢; 8.鳔前室。

1.鳔动、静脉及其分支;2.缢缩处;3.鳔前室外层;4.鳔后室;5.睾丸;6.脂肪;7.鳔前室。

2.3 泌尿系统

滇池金线鲃泌尿系统包括肾脏、输尿管、膀胱和尿道。

肾脏:在进化层次上属于中肾, 为1对暗红色长形扁平器官, 位于体腔背侧脊椎骨腹面。其背面具有肋骨压迹, 腹面有腹膜和脂肪覆盖, 左右两肾在形状上近似相称, 两者在前部各自分开, 在后部相连结。肾脏前部细小, 中部变宽, 后部又变窄。

输尿管、膀胱和尿道:输尿管为1对白色细管, 起于肾脏后部末端不远处腹侧, 较短, 分别开口于膀胱前部背侧。膀胱1个, 呈梨形, 位于肾脏近末端的腹侧, 后段渐细, 延续为尿道。膀胱内黏膜形成20多条纵形皱褶。膀胱背侧内面有3个纵嵴, 纵嵴之间有2个长卵圆形凹陷, 凹陷中央为输尿管的卵圆形开口 (见图15、图16) , 管内开口处各有1块瓣膜。

1.肾脏;2.输尿管;3.膀胱;4.卵巢;5.肠;6.肛门。

1.膀胱黏膜纵褶;2.输尿管开口;3.输尿管;4.右肾;5.左肾;6.膀胱纵嵴。

头肾:为1对红褐色、尖端朝前的三角形器官, 位于肾脏的前方, 第2～3椎骨腹侧两旁, 后缘达第3椎骨横突, 为淋巴样组织, 并不具有泌尿作用。头肾分为背腹两叶, 背叶小, 呈三角形;腹叶大, 也呈三角形。

2.4 雌性生殖系统

滇池金线鲃雌性生殖系统包括卵巢和输卵管。

卵巢:1对, 位于鳔腹面两侧, 肝胰的背方, 微黄红色, 呈长条状, 外有白膜和薄层腹膜包裹, 腹膜形成卵巢系膜将其悬挂于体腔背部, 内有大小不等的颗粒状卵粒, 卵粒大小随年龄和生殖季节不同而不同 (见图17) 。

1.肝左前叶;2.鳔前室;3.肝左后叶;4.鳔后室;5.心脏;6.肠左前曲;7.脾脏;8.肠左中曲;9.肠左背曲;10.卵巢。

输卵管:是每侧卵巢后端发出的细管, 输卵管外包腹膜, 在膀胱前方汇合, 沿膀胱腹面后行, 开口于尿生殖窦前端。

2.5 雄性生殖系统

滇池金线鲃雄性生殖系统包括睾丸和输精管 (见图18) 。

1.肝左前叶;2.鳔前室;3.肝左后叶;4.鳔后室;5.心脏;6.肠左前曲;7.睾丸;8.脾脏;9.肠及脂肪。

睾丸:位于鳔腹面, 肝胰的背方, 色白, 呈扁平长条状, 外有白膜和腹膜包裹, 并有腹膜形成的系膜将其悬挂于体腔背部。

输精管:是每侧睾丸后端发出的细管, 外包腹膜。两输精管在膀胱前方汇合, 沿膀胱腹面后行, 开口于尿生殖窦前端。

3 分析与讨论

滇池金线鲃属于鲤科鱼类, 其消化器官具有鲤科鱼类的特征, 没有分化出胃, 胰腺不形成独立的器官[5,6]。

下咽齿呈犬齿状, 鳃耙粗短、稀疏, 肠长度与体长基本相等, 表明滇池金线鲃食性属偏动物性的杂食性。虽然肝胰形状复杂, 分叶较多, 但仅在鳔缢缩处的腹侧具有结合部, 因而肝脏应视为左右两叶, 其余分叶属左右两叶的次级分叶。

滇池金线鲃鳔前室内层外的背腹面以及后室两侧面均具有丰富的血管, 由此推测, 滇池金线鲃鳔可能也具有气体交换的功能。

滇池金线鲃的头肾与中肾分离, 两者不接触。左右输尿管较短, 两者并不汇合, 而是各自开口于膀胱。左右输尿管之间的距离存在个体差异, 有的个体相互间距离较近, 有的则较远。膀胱从形态上应视作是一个独立的囊状器官, 而不是输尿管前端的简单膨大。

滇池金线鲃与其他大多数鱼类一样, 行体外受精, 其生殖器官较为简单, 在形态和构造方面并无特殊之处。

参考文献

[1]赵亚辉, 张春光.中国特有金线鲃属鱼类研究的回顾与展望 (鲤形目, 鲤科) [J].动物分类学报, 2006, 31 (4) :769-777.

[2]李维贤.滇池流域滇池金线鲃及部分土著鱼种的残存分布[J].吉首大学学报:自然科学版, 2001, 22 (4) :72-74.

[3]杨君兴, 潘晓赋, 李再云.云南滇池濒危特有种滇池金线鲃人工繁殖初报[J].动物学研究, 2007, 28 (3) :329-331.

[4]褚新洛, 陈银瑞.云南鱼类志[M].北京:科学出版社, 1989:4-19.

[5]盂庆闻, 苏锦祥.白鲢的系统解剖[M].北京:科学出版社, 1960:77-81.

3例全内脏转位者胃镜操作体会 第7篇

病例1, 女, 45岁, 因剑下隐痛不适, 无反酸、嗳气、烧心, 门诊就医时要求作胃镜检查, 术前未作B超等相关检查;例2, 男, 35岁, 例3, 男, 40岁, 均因上腹胀痛到胃镜门诊就医, 听诊时疑似右位心, 作胸部透视提示心脏右位, 作上腹部B超提示肝脏胆囊位于左上腹。

例1患者作胃镜检查时常规左侧卧位, 术者左手握住操作部, 右手扶持插入部前段, 经食管通过贲门, 进入胃腔内, 常规胃镜镜身前端向左向上旋转, 反复多次, 但镜身盘旋在胃底未能见到胃大弯皱褶, 后将镜身前端部调为向右旋转, 方进入胃体, 继续完成检查, 拔出胃镜后仔细查体, 发现心脏右位, 作胸部透视提示心脏大部分位于右侧, 作上腹部B超显示肝胆位于左上腹部, 考虑全内脏转位, 右位胃。

由于例1患者常规体位检查胃镜很困难, 例2、例3两患者采用右侧卧位, 术者左手握住操纵部, 右手扶持插入管前端, 使前端通过口垫, 沿舌送入口腔, 操纵部逆时针旋转90°, 操纵角度旋扭方向, 使镜前端与患者身体平行, 轻轻推进, 即沿舌根对向咽喉部, 对准食管入口, 松开角度旋钮, 轻轻推进, 进入食管[1]。胃镜前端通过齿状线缓慢插入贲门后在胃底部略向左、向上可见胃体腔, 推进至幽门进入十二指肠球部, 将先端右旋右转向上即可进入十二指肠降段[2], 就此顺利完成胃镜检查。

2 讨论

内脏转位作为一种先天畸形, 临床少见, 常因伴发其他疾病而被发现, 因其临床症状与常人不同, 有时很容易误诊, 作侵入性检查及手术时难度较大, 易误诊, 有时采取逆向思维才能完成操作。对内脏转位报道不少, 但对内脏转位的胃镜检查反转胃报道较少, 通常胃镜检查采取左侧卧位, 使胃液潴留于胃底部, 而反转胃在检查时胃镜进入贲门后常见不到胃腔, 曾有张国华等[3]报道11例反转胃镜检查体会采取常规左侧卧位, 镜身进入贲门后向左旋转180°方成功完成胃镜检查。笔者体会是逆向思维操作, 即采取右侧卧位, 这样反转胃的胃底部在右侧位时为最低位, 可见到胃液, 胃镜进入贲门后其余操作手法同正常位置胃镜检查一致, 即能顺利完成胃镜操作。

关键词：内脏转位,胃镜检查,逆向思维

参考文献

[1]李益农.消化内镜学[M].第2版.北京:科学出版社, 2004:236.

[2]苌新明.诊断学[M].第7版.北京:人民卫生出版社, 2008:598-600.