牛大肠杆菌范文（精选8篇）

牛大肠杆菌 第1篇

随着我国养牛业的规模化和集约化发展, 牛病的发病率和死亡率也在逐年增加。如牛大肠杆菌病就是牛群中常发的疾病, 本病也叫犊牛白痢病, 是由致病性的大肠杆菌引起的一种传染病, 临床表现为败血症和严重腹泻, 现介绍如下。

1流行特点

大肠杆菌是一种条件性致病菌, 广泛分布于自然界, 如动物粪便、垫料、灰尘和空气当中, 当环境条件变化、饲养管理不当、牛舍卫生条件差等应激因素存在时会诱发本病。传染途径主要是经消化道感染, 犊牛未及时吃到初乳或喂量不足时均可发生本病。

本病主要危害2周龄以内的犊牛, 以1周龄内的犊牛发病最多, 冬春寒冷季节舍饲期间发病率较高。中兽医认为本病的发生是由于在气候变化等不良因素刺激下, 导致体质下降, 正气虚弱, 不能抵御外邪入侵, 湿热毒邪经口而入引发本病。

2临床症状

临床上主要表现2种类型, 败血型和白痢型。

2.1败血型常发于2~3日龄的新生犊牛, 如果大肠杆菌经消化道进入血液, 可引起急性败血症。有的病例发病急, 病程较短, 表现发热, 精神沉郁, 腹泻, 可出现突然死亡。或出现发热、不食、精神不振、卧地不起, 有的伴有剧烈腹泻。

2.2白痢型多发于1~2周龄的犊牛, 特征表现为排出灰白色的粪便, 有时混有血液、气泡或混有未消化的凝乳块, 粪便稀薄, 呈水样或糊状, 有特殊的酸臭味。后期病牛肛门失禁, 常有腹痛。病程长的可出现肺炎及关节炎症状。发病较轻的几日内即可恢复正常, 但是由于消化机能受到影响, 生长发育受阻。严重病例因脱水而死亡。

3病理变化

病牛腹泻因而出现脱水, 肛门周围粘有稀便, 表现消瘦, 眼窝下陷, 皮肤弹性下降, 肋弓明显。皱胃黏膜红肿, 内常有大量的凝乳块, 小肠内容物如血水样, 含有气泡, 充血、出血。有的肠粘膜脱落, 肠系膜淋巴结肿大, 切面多汁或充血。病程长的可有肺炎和关节炎的病变。肠系膜淋巴结肿大, 切面多汁或充血。脾脏肿大, 肝、肾、心内膜有点状出血。

4诊断

根据本病的流行特点, 临床表现如1周龄内犊牛突然死亡或者排出灰白色的粪便, 及病理变化可初步判定。确诊可通过血清学试验确定其血清型。

本病要注意与一些腹泻性疾病相区别, 如沙门氏菌病、轮状病毒腹泻、球虫病、牛冬痢等区别。这些疾病症状相似, 主要通过病原鉴定。

轮状病毒病出现的症状与大肠杆菌病相似, 但病原是病毒。沙门氏菌病病原体是沙门氏菌。球虫病主要侵害3周龄以上的犊牛, 腹泻症状不严重, 粪便涂片镜检, 可发现球虫卵囊。牛冬痢的病原体是弯曲杆菌, 主要发生于冬季舍饲牛, 死亡率较低。

5防治方法

(1) 治疗原则为抗菌、补液、调节胃肠机能。犊牛发病后治疗时要限制吃奶, 减少喂奶量。脱水严重的犊牛应口服补液盐或输液治疗。口服补液盐的配方为氯化钠3.5g, 氯化钾1.5g, 碳酸氢钠2.5g, 葡萄糖20g, 加水1000m L, 也可以购买商品的补液盐, 配成水溶液, 全天自由饮用以防脱水。抗菌药物可使用磺胺脒、痢特灵、庆大霉素、链霉素、黄连素等口服。也可以使用庆大霉素按照1~1.5mg/kg·bw, 2次/d, 肌肉注射。穿心莲注射液, 犊牛20~30m L/次, 肌肉注射, 2次/d, 连用3d。

(2) 常用的补液药物有复方氯化钠、生理盐水或葡萄糖盐水, 犊牛可按照一次500~1000m L的用量静脉输液, 可配合碳酸氢钠、VC。肠道出血严重出现血便的可以肌注Vk3或者安络血等。

(3) 中药疗法可使用地榆、辣蓼、翻白草、马齿苋、风尾草各150g, 黄柏150g, 陈皮、山楂、仙鹤草各25g, 金银花100g, 黄连、神曲各400g, 加水煎煮两次合并药液, 浓缩至1500m L, 犊牛每次灌服50~100m L, 1~2次/d。

(4) 预防本病主要采取综合的预防措施。搞好环境卫生, 经常消毒。加强平时的饲养管理, 使牛抵抗力增强, 防止各种应激因素发生。牛出生后要及时吮吸初乳, 而且要吃足初乳, 断乳期不要突然改变饲料, 要逐渐的过渡。保持牛舍干燥, 可减少病原菌的感染。注意天气变化, 及时增添保温设施。

(5) 妊娠母牛的身体状况也关乎犊牛的健康, 因此要做好妊娠期母牛的饲养管理工作, 确保母牛在产后能分泌优质的乳汁。产房要清洁、干燥, 并经常进行消毒, 及时清除粪便和污物。母牛分娩前要用消毒液清洗后躯、外阴和乳房。

(6) 在本病高发的地区, 可进行定期预防用药。但是要注意用药物预防应防止长时间使用一种药物, 更不要一味加大药物剂量达到防治目的。应该考虑到有效药物可以在一定时间内交替、轮换使用, 药物剂量要合理, 防治还要有一定的疗程。

(7) 环境较差的牛场尤其要注意在犊牛每次哺乳或挤奶前, 必须对乳头、乳房清洗消毒。哺喂结束后, 需将犊牛的嘴擦干净, 以免互相吸吮乳头或脐带, 引发感染。

参考文献

[1]王同奎.牛大肠杆菌病的诊治[J].中国畜牧兽医文摘, 2010, 30 (3) :119.

[2]李永琢, 等.牛大肠杆菌病的病变及诊断[J].养殖技术顾问, 2010 (3) :82.

[3]宣华.牛病防治手册[M].北京:金盾出版社, 2002:89-91.

中西医结合治疗牛巴氏杆菌病 第2篇

一、临床症状

病牛开始体温可达41～42℃,除有呼吸困难、黏膜发绀、鼻镜干燥、精神沉郁、食欲和反刍减退或废绝、泌乳停止等全身症状外,还有以下几种不同类型:

1. 肺炎型。往往表现为呼吸困难或极度困难,流无色或带血泡沫样鼻液,伸颈仰头,张口吐舌,窒息死亡;或出现痛性干咳,胸部叩诊有浊音区,听诊有水泡音、罗音或摩擦音。

2. 急性败血型。常见腹泻,粪便带血,有时流带血泡沫样鼻液,24小时内虚脱而亡。

3. 水肿型。常见胸前、头颈部或腹下水肿,初热痛后硬凉,眼红肿、流泪,有时有血便,常窒息而亡。

4. 坏死性乳房炎型。常见临产奶牛或初产牛稽留高热,体温达40～42℃。眼结膜充血,眼球凹陷,耳、角冰凉,粪便稀黑,呈水样或煤焦油状。乳头基部或乳区后缘皮肤温度低,出现蚕豆大或手掌大小的不规则暗紫色斑块,继而出现丘疹状疱疹,内含淡黄色黏性液体。乳汁无明显变化,或可从乳头挤出紫红色水状或黏稠液体,伴随挤奶有气体排出,触诊乳房有捻发音。

二、剖检症状

1. 败血型。黏膜、内脏表面以及皮下组织和肌肉有广泛出血点;内脏器官充血,淋巴结显著水肿;胸、腹腔内有大量蛋花样积液;肺脏呈现纤维素性胸膜肺炎症状,弥漫性出血或坏死,切面呈大理石状,或呈纤维素性心包炎症状,有时与胸膜粘连;胃肠道可见急性卡他性或出血性炎症。

2. 水肿型。常见病牛的咽喉部或颈部皮下浆膜有浆液性浸润,切开可见深黄色的透明液体,有时伴有出血;咽淋巴结和颈前淋巴结高度肿胀。

3. 乳房炎型。病牛乳区肿胀,皮肤紫斑处的真皮乳头层充血或出血,皮下组织呈纤维素性肿胀,切面呈猪肝色;乳房间质疏松、水肿或纤维样坏死,腺泡组织结构被破坏,腺管中有出血性凝块,或呈脂肪样变性,有含铁血黄素沉着。

三、实验室诊断

1. 涂片镜检。无菌采取病牛病料制作涂片数张,分别进行美蓝和瑞氏染色,然后镜检。病菌呈卵圆形(或球杆状),两极浓染,并可清晰地看到两极之间两侧的连线。血液涂片用瑞氏染色时,细菌被染成蓝色或淡青色,红细胞染成淡红色,红细胞内有紫色的核。

2. 分离培养。将病料分别接种于鲜血琼脂、血清琼脂、普通肉汤于37℃培养24小时。病菌在鲜血琼脂上长出较平坦、半透明的露滴样菌落,不溶血,在血清琼脂中生长旺盛。在普通肉汤中呈均匀混浊,以后便有沉淀,摇动时沉淀物呈瓣状升起。

3. 生化试验。病菌8小时内能分解葡萄糖、甘露糖和蔗糖,产酸不产气。靛基质、接触酶、氧化酶为阴性,甲基红试验和VP试验均为阴性。石蕊牛乳无变化,不液化明胶。

4. 动物试验。无菌采取病料,剪碎、研磨、用灭菌生理盐水稀释成1∶5～1∶10乳剂,取上清液接种于鸡的皮下,剂量为0.5毫升。接种24小时后鸡死亡,发现接种局部肌肉及皮下组织发生水肿和发炎灶。胸腔和心包有浆液性纤维素性渗出物,心外膜有多数出血点。淋巴结水肿并增大。肝淤血,鸡肝表面有密布的针尖至针头大灰白色小坏死灶。

四、防治措施

1. 加強饲养管理。喂给牛营养丰富的优质饲料,提高其抗病力。搞好牛场清洁卫生和定期消毒,消毒剂可选用10%漂白粉、5%氢氧化钠或10%石灰乳。也可用牛出败氢氧化铝疫苗进行防疫,100千克以下的牛肌注或皮下注射4毫升,100千克以上牛肌肉注射6毫升,接种21天后产生免疫力,免疫期为9个月。

2. 西药治疗。初发病牛,可用5%葡萄糖氯化钠注射液1000～2000毫升,加入盐酸四环素或土霉素8～15克分别静脉注射,每日2次。或用青霉素300万～600万单位、链霉素5～10克,肌肉注射,每日1～2次。严重时,可用庆大霉素80万单位肌肉注射,每日2～3次。

3. 中药治疗。方一:清热解毒、凉血养阴。石膏120克,水牛角60克,生地黄、栀子、牡丹皮、黄芩、赤芍、玄参、知母、竹叶、连翘、桔梗各30克,黄连20克,甘草10克,水煎灌服。方二:补脾益肺。党参、茯芩、炒白术、陈皮、半夏、山药、炙甘草各45克,扁豆60克,莲肉、砂仁、薏苡仁各30克,水煎灌服。

牛大肠杆菌 第3篇

2013年11月份, 长春某奶牛养殖场发生一起犊牛严重腹泻的疾病, 多种常见药物治疗无效。经临床初步诊断为大肠杆菌引起的犊牛腹泻。笔者对发病犊牛进行了病原的分离、鉴定, 并对分离菌株进行了药敏试验, 为临床用药的选择以及犊牛腹泻疾病的防治, 提供一些数据支持。

1 材料与方法

1.1 材料

1.1.1 病料来源

犊牛腹泻粪样取自吉林省长春市某奶牛养殖场, 低温保存运至实验室。

1.1.2 主要试剂

EMB鉴别培养基、MH琼脂、麦康凯琼脂、营养肉汤购自北京陆桥技术有限责任公司;Taq DNA聚合酶、d NTP、DNA Marker (DL2000) 、细菌基因组提取试剂盒购自宝生物工程 (大连) 有限公司;药敏纸片、细菌微量生化反应管购自杭州微生物试剂有限公司。

1.1.3 实验动物

昆明系小鼠12只, 18 g左右/只, 购自吉林省实验动物中心。

1.2 方法

1.2.1 细菌的分离

取发病犊牛腹泻粪样, 无菌操作, 接种营养肉汤中增菌, 并于EMB平板和麦康凯琼脂平板, 划线分离, 37℃培养18~24 h, 挑取特征性菌落进行纯化, 4℃保存备用。

1.2.2 细菌的致病性试验

将纯化的细菌接种于营养肉汤中, 培养24 h, 稀释至1.0108CFU/m L, 以每只0.2 m L的剂量接种于小鼠, 对照组接种0.2 m L的无菌营养肉汤, 每组接种5只, 分别饲养, 观察并记录小鼠发病及死亡情况。

1.2.3 菌体形态与理化特性观察

将1.2.2证明有致病性的细菌纯化并革兰氏染色, 观察菌体形态;同时将细菌纯培养物接种于细菌微量生化反应管, 具体操作见说明书。

1.2.4 16S r RNA基因序列分析

取细菌纯培养物接种于营养肉汤, 培养, 按细菌基因组提取试剂盒提取其基因组DNA, 并以此为模板, 进行PCR扩增, 引物为细菌通用引物, 反应条件:94℃5 min;94℃1 min;55℃1 min, 72℃1 min, 30循环;最后72℃10 min, 取PCR产物经琼脂糖凝胶电泳检测, 将PCR产物提交于Ta Ka Ra公司, 完成测序。

测序结果通过NCBI的BLAST检索系统进行序列相似性比较, 并结合菌体形态与理化特性进行细菌的最终鉴定。

1.2.5 药敏试验

将细菌稀释成1108cfu/m L浓度, 取0.1 m L菌液涂布于MH平板上, 干燥后贴上药敏纸片, 37℃培养24 h, 观察抑菌圈并测量抑菌圈直径。判定结果参照CLSI制定的药敏标准。

2 结果

2.1 菌落形态观察

分离细菌在EMB琼脂平板长成圆形、中等大小、黑色呈金属光泽的菌落;在麦康凯琼脂平板上为圆形、中等大小、粉红色菌落。

2.2 致病性实验结果

分离菌株经小鼠攻毒发现, 该菌对小鼠具有致病性, 试验组小鼠均死亡, 对照组无变化。因此, 将该株细菌暂命名为ND131111-1。

2.3 病原菌菌体形态与理化特性

显微镜下, 菌体为革兰氏阴性杆菌、两端钝圆、双在或散在。

理化特性见表1。

依据菌落形态、菌体形态及理化特性结果, 并参照伯杰氏鉴定细菌学手册[4], 初步判定ND131111-1为大肠杆菌。

2.4 病原菌分子生物学鉴定

以菌株ND131111-1基因组为模板, 通过16S r RNA通用引物, 扩增出长度约1 500 bp的片段 (图1) , 测序结果显示克隆片段长1 409 bp。将该菌株的16S r RNA的基因序经BLAST检索系统比较, 最终判定菌株ND131111-1为大肠杆菌。

2.5 药物敏感性试验

表2为大肠杆菌ND131111-1对22种抗生素的药敏试验结果, 从表中可以看出, 该菌对大部分抗生素强耐药, 只有头孢唑林、头孢噻肟、磷霉素、呋喃妥因、多粘菌素B等5种抗生素对其敏感, 头孢噻吩对其中度敏感。

3 讨论

大肠杆菌可以引发包括人类在内的多种疾病, 其中, 犊牛腹泻的主要病因就是由该菌引发[5]。本实验从犊牛腹泻粪样中分离的病原菌经鉴定为大肠杆菌, 就证实了这一观点。

致病性实验显示, 该菌所攻毒的小鼠全部死亡, 虽然由于条件所限, 没有进行原动物的致病性实验, 但小鼠的致病性实验也可以证实, 该菌的致病性较强。

值得注意的是, 菌株ND131111-1具有较为广谱的耐药性, 对22种抗生素中的16种具有耐药性, 且基本上没有抑菌圈出现, 分析可能是该养殖场在养殖期间长期使用抗生素导致。目前, 只有头孢唑林、头孢噻肟、磷霉素、呋喃妥因、多粘菌素B等5种抗生素对该菌敏感, 头孢噻吩对其中度敏感。这样结果的出现, 提示我们应当正确使用抗生素, 不能在养殖中为预防疾病的发生而随意使用抗生素, 否则, 可能致使更为广谱的耐药菌株、甚至超级耐药菌的出现。

参考文献

[1]喻华英, 贾桂珍, 邹开胜.犊牛腹泻病中大肠杆菌的分离与鉴定[J].黑龙江畜牧兽医, 2006, (6) :67~68.

[2]王清江, 刘内生, 于学辉, 等.从犊牦牛腹泻样品中检出侵袭性大肠杆菌[J].中国人兽共患病杂志, 1998, 8 (2) :63~64.

[3]Ishida-Fujii K, Goto S, Kuboki H, et al.Isolation and identification of lactic acid bacteria with effect of immune protection to Eschericia coli in mice[J].Biofactors, 2004, 21 (1-4) :155~158.

[4]Holt J G, Krige N R, Senat h P H A, et al.Bergey's manual of determinative bacteriology (ninth edition) [M].Williams&Wilkins Press, 1994.

牛巴氏杆菌病的诊治 第4篇

我县永安乡洛乌村有76户农民, 共存栏黄牛136头, 水牛32头。2007年11月3日晚突刮大风, 气温剧降。翌日早上出牧时, 有2户农户发现自家的2头体质较差的黄牛卧地不起, 停止反刍, 呼吸困难, 并于当日下午相继死亡。之后5日内, 这2户另外2头黄牛和临近4农户家的牛群中也出现类似症状的病牛, 至疫情扑灭时, 共发病12头, 发病率7.18% (12/168) ;死亡5头, 死亡率2.98% (5/168) ;致死率41.67% (5/12) ;治愈7头, 治愈率58.3% (7/12) 。

本病呈散发型, 病牛无年龄、性别差异, 发病突然。在同村的125只绵羊和32头水牛均未见发病。

2 临床症状

2.1 败血型的病牛

病初体温急剧上升到41～42℃, 结膜潮红, 呼吸和脉搏加快, 食欲减退, 全身衰弱, 精神沉郁, 鼻子流出带血泡沫, 有的腹泻, 粪便带血、恶臭, 被毛粗乱, 肌肉震颤, 常伏卧不起, 流泪, 有时头、颈出现水肿。一般一昼夜内虚脱死亡。

2.2 水肿型的病牛

咽喉、头、颈、前胸等处的皮下组织发生炎性水肿, 严重时可波及下腹。触压时硬而痛、灼热。有时可见到肛门、会阴等处也发生水肿, 舌及周围组织肿胀。常伴发血便。呼吸困难, 眼红肿, 结膜发炎流泪, 可视粘膜变成蓝紫色。口流涎呈细丝状、连绵不断。头、颈直, 伸, 难以转动。最后窒息而亡。一般病程1～3 d。此病多见于水牛、牦牛或犊牛。

2.3 肺炎型的病牛较多见

以痛性干咳开始, 张口伸舌, 呼吸高度困难。气喘, 鼻内流无色或带血泡沫, 或浆液性、脓性鼻液。可视粘膜呈蓝紫色。听诊有口罗音及胸膜摩擦音, 叩诊有浊音区及痛感。下痢, 粪便恶臭, 混有血液。2岁以下的小牛多伴有带血的剧烈腹泻, 胃肠粘膜严重出血。病牛最后多因衰竭而亡。病程3 d左右。

2.4 慢性型的病牛较少见

多是由急性型转为此病型, 病牛长期咳嗽, 慢性腹泻, 消瘦无力。长期下去失去使役能力。

3 病理变化

全身淋巴结肿大、出血, 切面呈暗红色;咽喉部粘膜水肿, 皮下及肌肉组织有较为严重的出血性胶样浸润, 切开后流出淡黄色透明液体;气管内有大量泡沫状粘液, 肺脏呈明显的纤维素性肺炎特征, 大面积充血、出血、瘀血, 并伴有不同程度的红色肝变区, 切面呈大理石状胸膜有纤维素性附着物;胸腔和心包内大量积液, 心耳和心内、外膜广泛出血;肝脏体积增大、质地较软, 胆汁潴留, 呈墨绿色;大网膜和肠系膜上有大面积弥漫性点状、片状出血真胃和十二指肠粘膜水肿、增厚、出血, 结肠呈紫红色, 有的发生坏死。

4 实验室检验

采取病死牛血液、淋巴结、肝、肺、脾等病料, 分别制成涂片, 用碱性美蓝染色镜检, 结果在各病料涂片中均可见两极浓染的球杆菌。

5 病情诊断

根据发病情况、临床症状、病理变化及细菌学检验, 诊断为牛巴氏杆菌病。

6 防治措施

6.1及时隔离病畜与可疑病畜, 在采取抗菌消炎、对症治疗的同时, 加强饲养管理, 避免牲畜拥挤、受寒。增强机体抗病力, 尽量消除可能降低抗病力的因素。厩舍、用具等用10%石灰乳或5%氢氧化钠液严格消毒。垫草等污染物焚烧处理。粪便堆积后用5%氢氧化钠液表面消毒后生物热处理。尸体外表消毒后深埋。

6.2对假定健康牛群和半径2 km以内的牛群紧急免疫接种, 注射牛出败疫苗 (100 kg体重以上肌肉注射6 m L, 100 kg以下注射4 m L) 。

6.3对重症病牛治疗, 5%葡萄糖注射液500 m L、青霉素钠盐800万IU、0.5%氢化可的松注射液500 mg、40%乌洛托品注射液80 m L, 静脉注射, 2次/d;10%磺胺嘧啶钠200 m L、40%乌洛托品80 m L, 生理盐500 m L, 10%维生素C40 m L, 静脉注射, 2次/d, 呼吸困难者加入氨茶碱注射液20 m L;5%葡萄糖注射液500 m L, “914”3g, 混合后避光静脉滴注, 1次/d。

6.4对轻症病牛治疗, 肌肉注射青霉素400万IU、链霉素500万μg, 3次/d;静脉注射20%磺胺注射液100 m L (加入500 m L 5%葡萄糖注射液内) , 2次/d。6.5对肠炎症状病牛治疗, 在用上方治疗的同时, 氯霉素注射液300万IU, 肌肉注射, 3次/d;盐酸黄连素注射液20m L, 3次/d;氯霉素和黄连素交替使用, 到症状消失为止。

牛巴氏杆菌病的诊治 第5篇

1 临床症状

病初牛体温升高达41～42 ℃, 眼结膜潮红, 饮食欲明显减退或废绝, 反刍停止, 精神沉郁, 反应迟钝, 呆立, 低头拱背, 嘴角挂有泡沫状液体, 卧地不起, 呼吸加快并出现呼吸困难, 头颈前伸, 张口呼吸, 脉搏加快, 肌肉震颤, 个别牛有痛性干咳, 流涎, 鼻孔有粘性脓性鼻液流出, 鼻镜干燥, 两眼流泪, 腹痛, 病牛常回头顾腹, 下痢, 粪便混杂黏液或血液且具恶臭味。随着病情的发展, 在病牛的咽喉部、颈部及胸部的皮下结缔组织出现炎性水肿, 同时伴有舌及周围组织的高度肿胀, 舌伸出齿外, 呈暗红色, 可视黏膜发绀。

2 病理剖检

咽周围组织呈黄色胶冻样浸润, 咽淋巴结和颈前淋巴结急性高度肿胀, 上呼吸道黏膜卡他性潮红;颈部、咽喉部和四肢皮下有浆液性浸润, 切开流出透明、深黄色的液体;黏膜、浆膜、舌、皮下组织、肌肉中有出血点;胸膜粘连, 胸腔内有纤维素性渗出物;心冠脂肪、心内外膜出血明显, 心包积水;肺明显水肿, 有出血点, 肺脏表面有病变区, 呈大理石样花纹;肝脏肿胀、质脆, 个别牛肝脏表面有坏死灶;脾脏不肿大, 但有小出血点;肾稍肿, 淋巴结显著水肿。

3 实验室检验

无菌采取病死牛肾脏、肺脏、脾脏、肝脏和心血等, 置4 ℃冰箱中保存待检。

3.1 方法

(1) 镜检:将病料分别进行触片, 做革兰氏染色和瑞氏染色, 然后进行镜检。 (2) 分离培养:将病料无菌接种于鲜血琼脂培养基和麦康凯琼脂培养基, 37 ℃培养18～24小时, 然后进行纯化培养。 (3) 生化试验:用灭菌接种环勾取少许纯培养物接种于各种生化培养基中, 37 ℃培养18～24小时后观察结果。 (4) 动物试验:将纯培养物制成菌悬液注射2只健康家兔, 0.5 ml/只。 (5) 药敏试验:将纯化的细菌致密划线接种于鲜血琼脂平板上, 每块平板贴药敏纸片2片, 置于温箱中30分钟 , 然后倒置培养18～24小时 。

3.2 结果

3.2.1 镜检结果

在心血、肝脏、脾脏革兰氏染色片中可见到大量两端钝圆、两极浓染、红色的短杆菌。在心血、肝脏、脾脏瑞氏染色片中可见到多量两端钝圆、两极浓染、蓝色的短杆菌。

3.2.2 菌落形态及培养特性

在鲜血琼脂平板上生成灰白色、湿润而粘稠、圆形、微隆起、半透明、不溶血的菌落。在普通琼脂上形成细小透明的露珠状菌落[1]。在普通肉汤培养基中培养24小时, 开始均匀混浊, 连续培养5～7天以后, 形成粘性沉淀和菲薄的附壁菌膜。明胶穿刺培养, 沿穿刺孔呈线状生长, 上粗下细。

3.2.3 生化试验

对2株细菌进行了生化试验, 结果见表1。

注:“十”表示阳性, “-”表示阴性。

3.2.4 动物试验

家兔注射后48小时内死亡, 立即剖检, 从死亡家兔的心血和实质脏器中分离到与注射菌株一致的大量两极浓染的小杆菌。

3.2.5 药敏试验

对丁胺卡那霉素、羧苄西林、诺氧沙星、头孢呋肟、新霉素、头孢菌素V高度敏感, 氨苄西林、庆大霉素中度敏感, 而对四环素、复合磺胺、氯霉素等不敏感。

根据病史、临床症状、病理变化和实验室检验, 确诊为牛多杀性巴氏杆菌病[2,3]。

4 小结与讨论

4.1 多杀性巴氏杆菌为条件性病原菌, 常存在于健康畜禽的上呼吸道黏膜, 与宿主呈共栖状态, 正常情况下不引起发病。当牛感受风寒、过度疲劳、饥饿等因素使机体抵抗力降低时, 可引发败血症。该病主要经消化道感染, 其次通过飞沫经呼吸道感染, 亦有经皮肤伤口或蚊蝇叮咬而感染的。该病常年可发生, 在气温变化大、阴湿寒冷时更易发病, 常呈散发性或地方流行性。此次发病的主要原因:一是当时正逢降温、降雪, 牧场饲料缺乏, 导致牲畜营养缺乏, 机体抵抗力降低, 细菌大量繁殖、毒力增强;二是该团连续多年未免疫牛出败疫苗;三是病畜死尸没有做无害化处理, 造成了病原传播, 疫源扩散, 导致牛群感染本病。

4.2预防此病应加强计划免疫, 每年定期注射疫苗;加强饲养管理, 避免拥挤、受寒、受热和过度劳累, 提高抵抗力;搞好牛舍及周围环境卫生, 对牛舍及污染场地进行清理消毒;病牛立即隔离治疗, 被病牛污染的饲料或垫草要烧毁, 病牛的粪便要进行发酵处理。牛舍和牛活动的地方及用具都要用3%来苏水或5%漂白粉、20%热草木灰水、10%石灰乳进行消毒。

4.3由于该病发病急, 部分病牛来不及治疗而死亡。其它病牛立即隔离, 采用敏感药物进行治疗, 同时对圈舍用10%石灰水消毒, 每日2～3次, 对同群未发病牛进行牛出败疫苗紧急接种周后病情基本得到了控制[4]

参考文献

[1]金钺, 郑杰, 张红英, 卢中华, 杨霞.BALB/C氏小鼠巴氏杆菌病的诊断报告.河南农业科学, 2004, (1) :56.

[2]阿曼古丽.夏依扎, 肖开提, 迪力木拉提.羔羊多杀性巴氏杆菌的分离鉴定.新疆畜牧业, 2005, (6) :41~43.

[3]文英, 韩志辉.牦牛多杀性巴氏杆菌病病原的分离与鉴定.黑龙江畜牧兽医, 2007, (3) :78~79.

牛巴氏杆菌病的防治技术 第6篇

1 流行情况

本病的发生一般无明显的季节性, 但以冷热交替, 气候剧变, 闷热, 潮湿, 多雨和冬天下雪的时期发生较多。体温失调, 抵抗力降低, 是本病主要的发病诱因之一。另外长途运输或频繁迁移, 过度疲劳, 饲料突变, 营养缺乏, 寄生虫等也常常诱发此病。因某些疾病的存在造成机体抵抗力降低, 易继发本病。本病多呈地方流行或散发, 同种动物能相互传染, 不同种动物之间也偶见相互传染。

2 发病机理

当气候, 季节变化, 长途运输, 营养不良, 过度疲劳, 饲料突变, 寄生虫等因素导致动物机体抵抗力降低时, 健康带菌动物的呼吸道和扁桃体内所存在的巴氏杆菌, 会变成强毒菌而造成内源性感染;因某些疾病的存在造成机体抵抗力降低, 易继发本病。本病多呈地方流行或散发, 同种动物能相互传染, 不同种动物之间也偶见相互传染;另外可由于污染的饲料、水、空气、器具等经消化道、呼吸道、外伤而造成外源性感染。

3 临床症状

牛巴氏杆菌病潜伏期2~5d。

3.1 败血型

多见于水牛, 表现高热 (4l~42℃) , 精神沉郁, 结膜潮红, 鼻镜干燥, 呼吸困难, 不食, 泌乳和反刍停止。有时还流鼻液和眼泪, 腹痛下痢, 粪初为粥状, 后呈液状并混有粘液、黏膜片和血液, 具有恶臭, 常于12~24h死亡。

3.2 水肿型

以牦牛常见, 除表现全身症状外, 病牛头、颈、咽喉及胸前皮下水肿, 重者可能波及下腹, 手指按压初热、硬、痛;后变凉, 疼痛也减轻, 舌及周围组织高度肿胀, 流涎, 呼吸困难, 眼红肿, 流泪, 黏膜发绀, 常因窒息和下痢虚脱而死, 病程多为12~36h。

3.3 肺炎型

病牛表现急性纤维素性胸膜炎, 肺炎症状, 流鼻液并带血红色, 咳嗽干而痛, 胸部叩诊出现浊音区, 听诊有支气管呼吸音或胸膜摩擦音。后期有的发生腹泻, 便中带血, 有的尿血, 数天至2周死亡, 有的转为慢性型。

3.4 慢性型以慢性肺炎为主, 病程1个月以上。

4 病理变化

(1) 败血型一般为败血症变化。内脏器官充血, 在黏膜、浆膜及肺、舌、皮下组织和肌肉, 都有出血点, 脾脏无变化和有小点出血, 肝脏和肾脏实质变性, 淋巴结显著水肿, 胸腹腔内有大量渗出液。 (2) 水肿型病例见于头、颈和咽喉部水肿。急性淋巴结炎和肝、肾、心等实质器官发生变性, 脾肿大罕见。 (3) 肺炎型主要表现为纤维素性肺炎和胸膜炎, 肺脏切面大理石样变。

5 防治

牛巴氏杆菌病的科学防控 第7篇

1 病原体

牛巴氏杆菌病的病原体是多杀性巴氏杆菌,本菌是一种两端钝圆的球状短杆菌,不能运动,无芽胞。革兰氏染色表现阴性,由于涂片后使用碱性美蓝或瑞氏染色后呈两极浓染,故又称两极杆菌,是本病显微镜检查的特征。本菌对外界抵抗力不强,自干燥的环境中存活2～3d,阳光直射和高温巴氏杆菌立即死亡[1]。常用的消毒液如2%火碱和3%来苏儿均能杀死本菌。

2 流行特点

本菌是条件性致病菌,正常情况下存在于健康牛的呼吸道和扁桃体中,与宿主共生,不引起牛发病。当气候、季节变化,长途运输和寄生虫感染,营养不良等因素导致动物机体抵抗力降低时,牛可能发病。病牛和带菌牛是主要的传染源,其排泄物、分泌物不断排出有毒力的病菌,污染饲料、饮水、用具和外界环境,主要经消化道感染,其次通过飞沫经呼吸道感染健康家畜,亦有经皮肤伤口或蚊蝇叮咬而感染的。本病一年四季均可发生,在温差较大、阴湿寒冷时更易发病,多呈地方性流行或散发。

3 临床症状及剖检变化

牛布氏杆菌病的潜伏期一般为2～5d。根据临床表现,本病常表现为急性败血型、肺炎型、水肿型和慢性型。

急性败血型病牛发热,体温高达41～42℃,精神不振、呼吸困难、有的鼻孔流出带血黏液。黏膜发绀、反刍停止。腹泻,有的便中含有黏液或血液。剖检病牛主要表现败血症变化,内脏器官和各组织广泛性出血。常来不及查清病因和治疗就死亡。

肺炎型最为常见,主要表现为纤维素性胸膜肺炎的症状。病牛发热、呼吸困难、干咳、有泡沫状鼻汁或脓性鼻液。叩诊肺部呈浊音,有摩擦音,有疼感。后期有的发生腹泻,有的病牛会出现带有黏液和血块的粪便。剖检主要表现为纤维素性肺炎,肺组织颜色从暗红到灰白色,切面呈大理石样病变。胸腔积聚大量有絮状纤维素的渗出液。此外,还常伴有纤维素性心包炎和腹膜炎[2]。病程持续数天,时间较长的有的转为慢性型。

水肿型水牛和牦牛多发,病牛除表现全身症状外,特征症状是胸前和头颈部水肿,在颌下、喉部出现肿胀,有时可以蔓延到垂肉、胸腹部、四肢等处。眼红肿、流泪,舌咽肿胀,呼吸困难,皮肤和黏膜发绀。剖检肿胀部位切开水肿部会流出微混浊的淡黄色液体,呈出血性胶样浸润[3]。

慢性型较少见,多由急性型转化而来,病牛表现咳嗽,腹泻等症状,渐进性消瘦,四肢无力,病程1个月以上。

4 诊断

根据本病的发病特点和症状及剖检变化可做出初步诊断。败血型常突然死亡和剖检多器官点状出血,水肿型常见咽喉部水肿,肺炎型主要表现肺部有纤维素性肺炎和胸膜炎。如需确诊,应做实验室检查。做好本病的鉴别诊断,如牛传染性胸膜肺炎、咽炭疽和气肿疽、恶性水肿区别。气肿疽好恶性水肿患病部位呈现气性炎性肿胀,有捻发音,切开后有起泡和酸败气味的液体流出。牛传染性胸膜肺炎也叫牛肺疫,我国已消灭此病。区别咽炭疽:炭疽病牛临死前常有天然孔出血,血液呈暗紫色,凝固不良,呈煤焦油样,死后尸僵不全,尸体迅速腐败。剖检脾脏可比正常肿大2～3倍病原检测为革兰氏阳性、两端平直、呈竹节状、粗大带有荚膜的炭疽杆菌。

确诊本病最好进行实验室诊断。可以采集病料或血液进行直接镜检或分离培养,根据本菌呈现革兰氏阴性、两端钝圆短小杆菌,可基本确诊。

5 防控措施

5.1 治疗

对于发病牛可使用敏感药物注射治疗,如氧氟沙星,恩诺沙星,头孢类等。结合0.9%生理盐水、5%葡萄糖注射液、地塞米松磷酸钠注射液、VC、5%碳酸氢钠注射液等补液治疗效果更好,水肿严重的病牛用速尿注射液[4]。

加强消毒工作,做好牛的护理,对于发病牛要严格隔离治疗,防止传染。

5.2 预防

加强饲养管理工作,经常性消毒。减少牛群应激的发生,增强牛的抵抗力。牛舍冬季做好保温,减少有害气体含量,减少病菌滋生。

使用疫苗进行免疫接种。牛巴氏杆菌病灭活疫苗,免疫期为9个月。一般体重100kg以下的牛,皮下或肌肉注射4ml,体重大于100kg的注射6ml。可起到一定预防作用。

参考文献

[1]宣华.牛病防治手册[M]北京:金盾出版社,2002.

[2]蒋静.牛巴氏杆菌病的诊断与治疗[J].草业与畜牧,2012(4):42-43.

[3]罗忠菊.牛巴氏杆菌病的诊治[J].现代农业科技,2015(2):277-278.

1起牛巴氏杆菌病的诊治 第8篇

1 发病情况

三江县八江乡的某村屯是一个环境优美, 天然牧草资源丰富的侗族群众聚居地, 该屯有农户162户, 存栏黄牛29头。2014年10月3日, 杨某饲养的2头黄牛开始出现流涎、跛行等临床症状。村级动物防疫员用抗生素进行治疗, 较早出现临床症状的1头病牛5 d左右痊愈、康复。但牛又陆续发病, 村级动物防疫员便向八江乡水产畜牧兽医站报告, 技术人员到场了解病例的一般情况后, 立即向三江县动物疫病预防控制中心报告。笔者接到报告后及时到现场进行流行病学调查和临床诊断, 了解到8 d的时间内病牛相继发展到11户15头, 但没有发现死亡病例。全村牛群已经进行过秋季集中免疫。

2 临床症状

病牛体温升高至41~42℃, 肌肉震颤, 精神沉郁, 行走摇晃不稳, 皮温不匀, 食欲减退或废绝, 反刍停止;鼻镜干燥或出汗, 鼻孔呼出热气, 有黏液性鼻液流出;轻度流涎, 嘴外没有泡沫状及牵丝状的涎水, 唇内面、齿龈、舌面和颊部黏膜也没有溃疡;眼结膜潮红;患病初期病牛的粪便为褐色粥样, 后期为水样含有黏液、气泡和血液伴有恶臭;乳房和蹄冠部没有水泡和溃疡。

3 实验室检验

取病牛血液在培养基上进行细菌分离培养, 用革兰氏染液染色培养出的病菌, 镜检可见卵圆形短杆状、两极呈明显浓染、革兰氏阴性小杆菌;碱性美蓝染液染色病菌, 镜检可见两极浓染的椭圆形小杆菌。

4 诊断

根据流行病学特点、症状表现及实验室检验结果, 诊断该病为牛巴氏杆菌病。

5 防治措施

1) 病牛停止放牧和劳役, 并与健康牛进行有效的隔离。

2) 加强饲养管理, 做好牛舍清洁卫生, 用含氯消毒剂对栏舍及周围环境进行消毒, 早、晚各1次。

3) 药物治疗。

方案一:青霉素400万IU、链毒素500万IU, 生理盐水稀释后肌肉注射, 3次/d, 连用3~5 d。

方案二:20%磺胺嘧啶钠, 按每千克体质量0.07g (首量加倍) , 肌肉注射, 2次/d, 连用3 d。

方案三:2%氧氟沙星针剂, 每千克体质量3~5mg, 复方庆大霉素针剂, 每千克体质量2~4 mg, 两药分别肌肉注射, 2次/d, 连用3 d。

4) 给未被感染的健康牛注射牛出血性败血症灭活疫苗。

采取以上防治措施后, 该村无牛死亡病例, 5 d后全屯牛群恢复正常, 无新病例发生。

6 小结

1) 巴氏杆菌为条件病原菌, 病牛和带菌动物是本病的传染源, 细菌常存在于健康畜禽的呼吸道, 与宿主呈共栖状态。当牛受冷、过度疲劳、营养不良、拥挤、闷热、长途运输或饥饿等机体抵抗力降低时即可致病, 经淋巴液进入血液引起败血症。本病为细菌病, 发病快、死亡率高, 发生本病后应及时注射大量抗生素, 以减少牛群的发病率和死亡率。

2) 该病多经消化道, 其次为呼吸道, 亦可经皮肤黏膜损伤或吸血昆虫叮咬而传染。该病常年可发生, 也可与其它病毒或细菌病继发感染。故应做好牛栏环境卫生, 定期对栏舍进行消毒, 灭虫灭蚊等措施可减少此病的发生。

3) 牛巴氏杆菌病常在老疫区暴发, 故老疫区应每年注射2次牛出血性败血症灭活疫苗进行防疫, 避免老疫区暴发此病。

摘要：介绍了1例黄牛巴氏杆菌病的发病情况、临床症状、实验室检验、诊断及防治措施。